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产品说明：

使用说明：

基本描述:

链霉亲和素磁珠(Streptavidin Magnetic Beads) 采用蛋白偶联技术将链委亲和素(SA)共价连接于固相载体表面，可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子。本品采用超顺磁性微球，粒径均一，形貌规整，有利于方便快捷的捕获目标分子以及实现磁性分离。本品还能配套自动化设备进行高通量操作。

使用方法
1.需要材料

1.1缓冲液:以下为常用的缓冲液成分，用户可根据需要调整缓冲液的盐浓度及pH。

Buffer l (适用于结合生物素化核酸) : 10 mM Tris-HCl (pH7.5) ，1 mM EDTA, 1 M NaCl, 0.01%~0.1% Tween-20

Buffer ll (适用于结合生物素化抗体/蛋白) : 1xPBS， pH 7.4，含0.05% Tween-20,可根据需要添加0.01%~0.1% BSA

1.2磁性分离器:可选用磁性分离器，适用于1.5 mL、2 mL或15 mL离心管

1.3旋涡振荡器

1.4旋转混合仪

1.5移液器及吸头

1.6合适的离心管

2.结合生物素化核酸

2.1.将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20s,振荡重悬磁珠。用移液器移取100μl磁珠到新的离心管中。将离心管置于磁性分离器上，静置1 min (此操作后续简称为磁性分离)，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。

[注意] :用户可根据生物素化分子的多少，参考产品特性中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。

2.2.加入1 ml Buffer I到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。[备注] :当步骤2.1取用磁珠体积大于1 ml时，加入与磁珠体积相同的Buffer I。

2.3.重复“步骤2.2”一次 。

2.4.加入500 μl用Buffer l稀释的生物素化核酸(使磁珠浓度为2 mg/ml)，充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合30 min。

2.5.磁性分离，将上清液转移至新的离心管。

2.6.按“步骤2.2"的方法洗涤磁珠三次。

2.7.根据后续实验的要求，加入合适的低盐缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化核酸步骤完成。磁珠可用于后续操作。

2.8.用户可以通过测定反应前后核酸的浓度，计算结合到感珠上的核酸量( (反应前浓度-反应后浓度) x反应溶液体积:。

3.结合生物素化抗体/蛋白

3.1将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20s,振荡重暴磁珠。用移液器移取100 μl磁珠到新的离心管中。磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管.

[注意] :用户可根据生物素化分子的多少，参考产品特性中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。

3.2加入1 ml Buffer II到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。磁性分离，移去上清液。[注意] :当步骤3.1取用磁珠体积大于1 ml时，加入与磁珠体积相同的Buffer II .

3.3重复“步骤3.2"两次，共洗涤三次。

3.4加入1 ml用Buffer II稀释的生物素化抗体/蛋白(使磁珠浓度为1 mg/ml)，充分振荡重悬磁珠。将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合60 min。

3.5磁性分离，将上清液转移至新的离心管.

3.6按“步骤3.2"的方法洗涤磁珠五次。

3.7根据后续实验的要求，加入Buffer II或其他合适的缓冲液，重悬磁珠。至此结合生物素化抗体/蛋白步骡完成。磁珠可用于后续操作。

注意事项：

1、避免对磁珠进行冷冻操作；

2、为减少磁珠损失，每次磁性分离的时间应不少于1min;

3、吸取磁珠前需要先充分震荡将其重悬均匀，且操作过程中避免产生气泡;

4、建议使用质量好的移液器吸头和反应管，避免因粘附磁珠及溶液造成的损失；

5、生物素化分子的大小会影响磁珠的载体。用户需根据实验确定磁珠对特定生物素化分子的载量;

6、生物素化分子的加入量应为磁珠载量的1-2倍，以使磁珠饱和;

7、为了您的安全和健康，请穿实验服并载-一次性手套操作。

本产品仅供科研使用，不可用于临床诊断应用或其他用途。